糖原PAS染色液 ,5X50ml

  

名称PAS染色液（糖原染色液）/PASStainingSolution  
试剂组分  
试剂（A）过碘酸溶液4℃避光  
试剂（B）SchiffReagent4℃避光  
试剂（C）苏木素染色液RT避光  
试剂（D）酸性乙醇分化液RT  
【注】有效期12个月  
自备材料  
1、10%福尔马林固定液  
2、蒸馏水  
3、乙醇  
产品简介  
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。  
过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。  
本糖原PAS染色液的特点：采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。  
使用参考  
操作步骤（仅供参考）：  
1、常规固定，常采用10%的福尔马林，常规脱水包埋。  
2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。  
3、自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。  
4、置于过碘酸溶液中，室温放置5～8min，一般不宜超过10min。  
5、自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。  
6、样本放入SchiffReagent，置于室温阴暗处，浸染10～20min。  
7、自来水冲洗10min。  
8、样本置于苏木素染色液中，染细胞核1～2min。  
9、酸性乙醇分化液分化2～5s。  
10、自来水冲洗10～15min后，更换双蒸水清洗，使其返蓝。  
11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。  
使用结果  
PAS反应阳性物质>>红色或紫红色  
细胞核>>蓝色  
细胞质>>深浅不一的红色  
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和SchiffReagent中作用时间的长短。  
阴性对照(可选)：  
1、对照切片可以用唾液，取唾液片（过滤后用）处理30～60min后，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。  
2、对照片可以淀粉酶，取淀粉酶1g于双蒸水或PBS(pH5.3)100ml，处理30～60min后，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。  
3、如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入SchiffReagent。染色结果：对照片呈阴性反应，无紫红色颗粒。  
注意事项  
1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。  
2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。  
3、过碘酸溶液和SchiffReagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前，最好提前30min取出恢复到在室温后，避光暗处使用。  
4、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。  
5、在过碘酸溶液和SchiffReagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。  
6、本染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色试剂盒（细胞真菌专用），因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。  
7、冷冻切片染色时间尽量要短。  
8、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。