本试剂盒适用于琼脂糖凝胶DNA的纯化回收。在高离序盐存在的情况下，DNA片断选择性的吸附于离心柱内的硅基质膜上，再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤，漂洗液将引物、核苷酸、蛋白、酶等杂质去除，最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净DNA从硅基质膜上洗脱。
- 离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜，柱与柱之间吸附量差异极小，可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。
- 使用了优质溶胶液，不含传统溶胶液的碘化钠和高氯酸盐，不抑制回收后酶切、连接克隆等下游反应。
- 溶胶液调制成为了黄颜色，便于观察溶胶效果和监测pH值变化从而达到最佳结合效果，大大提高回收效率。
- 改进的溶胶液配方，大大提高了缓冲能力和稳定性，即使样品变化很大也能将pH缓冲在最佳结合范围内。
- 快速、方便，不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂，也不需要乙醇沉淀。
- 在长波紫外灯下，用干净刀片将所需回收的DNA条带切下，尽量切除不含DNA的凝胶，得到凝胶体积越小越好。
- 将切下的含有DNA条带凝胶放入1.5mL离心管，称重。
先称一个空1.5mL离心管重量，然后放入凝胶块后再称一次，两次重量相减，得到凝胶的重量。 - 加3倍体积溶胶液DD。
如果凝胶重为100mg，其体积可视为100μL，则加入300μL溶胶液。
如果凝胶浓度大于2％，应加入6倍体积溶胶液。 - 56℃水浴放置10分钟（或直至胶完全溶解）。每2～3分钟涡旋震荡一次帮助加速溶解。
- 可选，一般不需要：每100mg最初的凝胶重量加入150μL的异丙醇，震荡混匀。
有时候加入异丙醇可以提高回收率，加入后不要离心。回收大于4Kb的片段时，不加入异丙醇，加入有时反而可能降低回收效率。 - 将上一步所得溶液加入吸附柱EC中（吸附柱放入收集管中），室温放置1分钟，12000rpm离心30～60秒，倒掉收集管中的废液。
使用平衡液预处理硅胶膜吸附柱为必做步骤，具体方法参见附录参考“关于平衡液的使用”。
如果总体积超过750μL，可分两次将溶液加入同一个吸附柱EC中。
过滤下的溶胶液和收集管内残存的强碱性平衡液混合后，溶胶液可能会从黄色变成橘红甚至紫色，此为酚红pH指示剂碱性条件下的正常颜色变化。 - 加入600μL漂洗液WB （请先检查是否已加入无水乙醇!），12000rpm离心30秒，弃掉废液。
- 加入600μL漂洗液WB，12000rpm离心30秒，弃掉废液。
- 将吸附柱EC放回空收集管中，12000rpm离心2分钟，尽量除去漂洗液，以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
- 取出吸附柱EC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加50μL洗脱缓冲液EB（洗脱缓冲液事先在65～70℃水浴中加热效果更好），室温放置2分钟，12000rpm离心1分钟。如果需要较多量DNA，可将得到的溶液重新加入吸附柱中，离心1分钟。
洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要DNA浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积不应少于25μL，体积过小降低DNA洗脱效率，减少产量。
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琼脂糖凝胶电泳试剂盒
